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	<title>doktor-schubert · net &#187; Protocol</title>
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	<description>Homepage of Dr. med. Mario Schubert</description>
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		<title>Alternative screening method for positive pLKO-Clones</title>
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		<comments>http://en.doktor-schubert.net/2007/alternative-plko-screening-method/#comments</comments>
		<pubDate>Wed, 26 Sep 2007 22:20:36 +0000</pubDate>
		<dc:creator>Mario</dc:creator>
				<category><![CDATA[Lab]]></category>
		<category><![CDATA[Protocol]]></category>
		<category><![CDATA[Research]]></category>

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		<description><![CDATA[Referring to the Addgene&#8217;s cloning protocol for the lentiviral vector pLKO.1 I would like to propose an alternative screening method für positive clones. The original protocol suggested a double digest with EcoRI and NcoI that resulted in two relatively large bands &#8211; one at 2kb and one at 5kb. In concequence, the length relations made [...]]]></description>
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<p><a href="http://doktor-schubert.net/photos/Digest_pLKO_XhoI.jpg" title="Digest of pLKO with XhoI::Clones 7B, 7F-7H and 7J potentially are positive." class="liimagelink" rel="lightbox[63]"><img title="Digest of pLKO with XhoI" src="http://doktor-schubert.net/photos/.thumbs/.Digest_pLKO_XhoI.jpg" border="0" alt="Digest of pLKO with XhoI" hspace="0" vspace="0" width="96" height="58" align="left" /></a>Referring to the <a href="http://www.addgene.org/pgvec1?f=c&amp;cmd=showcol&amp;colid=170&amp;page=2" class="liexternal">Addgene&#8217;s cloning protocol</a> for the lentiviral vector <a href="http://www.addgene.org/pgvec1?f=c&amp;identifier=10878&amp;attag=l&amp;atqx=&amp;cmd=findpl" class="liexternal">pLKO.1</a> I would like to propose an alternative screening method für positive clones.<span id="more-63"></span><br />
The original protocol suggested a double digest with EcoRI and NcoI that resulted in two relatively large bands &#8211; one at 2kb and one at 5kb. In concequence, the length relations made it hard to reliably identify clones with an intact isert. With this alternative Protocol, conducting a digestion with XhoI, you get a gel picture that is, in my opinion, much easier to interpret.</p>
<p><strong>unfortunately, the protocol is currently only available in German.</strong></p>
<h2>Alternatives Screening-Protokoll</h2>
<h3>Material</h3>
<ul>
<li>Plasmid Miniprep Kit (Qiagen #27104)</li>
<li>XhoI (Fermentas #ER0691)</li>
<li>TopVision LE Agarose (Fermentas #R0491)</li>
<li>Rotiphorese 10x TBE-Buffer (Carl Roth 3061.1)</li>
</ul>
<h3>Procedere</h3>
<ol>
<li>(Tag 1) Nach der Trafo und 16-18h Kultur auf LB-Amp Agarplatten ca. 5-10 Kolonien von der Platte picken und in 3ml LB-Amp übernacht kultivieren.</li>
<li>(Tag 2) 2ml der ÜN-Kultur für eine Mini-Präp verwenden,<br />
Achtung: für den Elutionsschritt ddH<sub>2</sub>O oder Tris-HCL Puffer nehmen, da EDTA die anschließenden enzymatischen Reaktionen stören kann. Die restliche Kultur wird vorübergehend im Kühlschrank bei +4°C gelagert oder kann als Glycerolstock eingefroren werden.</li>
<li>Für die photometrische Messung des DNA-Gehalts, mache eine 1:100 Verdünnung mit 5µl miniprep DNA und 495µl ddH<sub>2</sub>O</li>
<li>Setze einen Master-Mix für den Verdau-Ansatz an (plane für n+2 Ansätze).<br />
Berechne für jeden Ansatz:</p>
<ul>
<li>1µg miniprep DNA</li>
<li>2µl Puffer R (Fermentas 10x Puffer für XhoI)</li>
<li>0.5µl XhoI</li>
<li>auf 20µl ddH<sub>2</sub>O</li>
</ul>
</li>
<li>Inkubiere die Verdauansätze bei 37°C für 1-2h</li>
<li>Trage die Verdauansätze auf ein 1% Agarosegel auf und mache einen Gellauf bei 10V/cm für ca. 45 Minuten.</li>
</ol>
<p>Positive Klone haben eine deutliche Bande bei 380bp, außerdem eine schwache Bande bei 190bp und den &#8220;Rest&#8221; bei ~5000bp. Diese Klone sollten zur Sequenzierung eingeschickt werden. Bei nicht intakten Inserts ergibt sich ein Bandenshift von 50-80bp. Klone mit religiertem Stuffer haben außerdem eine Bande bei ~2000bp.</p>
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